Таутомери-зация азотистых оснований – источник ошибок реплика-ции
Енолизация гуанина
Мутагены
5-Бром урацил
Мутагены
Тиминовые димеры
Репарация ДНК
Эксцизионная репарация оснований
Рекомбинационная репарация
Репарация ДНК
Рост генетического разнообразия
Рекомбинация у прокариот
Гомологичная рекомбинация
Нереципрокная гомологичная рекомбинация
Транспозиция
Транспозоны
Инсерционные транспозоны (IS)
Составные транспозоны
Репликативный транспозон
Простая транспозиция
Функции транспозонов
Плазмиды
Плазмиды
Плазмиды
Структура F-плазмиды
Горизонтальный (латеральный) перенос генов
Горизонтальный (латеральный) перенос генов
Образование мерозигот
Конъюгация бактерий
Эксперимент Д. Ледерберга и Э. Тэйтума (1946), доказавший явление конъюгации
Эксперимент Б. Дэвиса, показавший роль физического контакта при конъюгации
Конъюгация E.coli
F+ X F- конъюгация
F+ X F- конъюгация
Инсерция F-плазмиды в бактериальную хромосому с образованием Hfr-клетки
Конъюгация Hfr-клетки с новым реципиентом
Трансформация
Трансформация фрагментами ДНК и плазмидами
Трансформация на примере S.pneumoniae
Бактериальная трансформация
Перенос ДНК в клетку
Трансдукция
Общая трансдукция
Общая трансдукция
Специфическая трансдукция
Специфическая трансдукция
Специфическая трансдукция
Опыт Джона Кернса (1988 г.)
CRISP-кассеты
Спасибо за внимание
5.07M
Категория: БиологияБиология

Изменчивость бактерий. (Лекция 4)

1.

2.

3.

4.

5. Таутомери-зация азотистых оснований – источник ошибок реплика-ции

Таутомеризация
азотистых
оснований –
источник
ошибок
реплика-ции

6. Енолизация гуанина

Временная енолизация гуанина приводит к формированию
GC – AT транзиции (мутант). Мутация проявляется во втором
поколении, если GT не будет репарирована в первом поколении.

7. Мутагены

Мутаген
Эффект
5-Бромурацил
Аналог основания
2-Аминопурин
Аналог основания
Этил метансульфонат
Алкилирующий агент
Оксид азота
Дезаминирующий агент
Профлавин
Интеркалирующий агент
Акридин оранжевый
Интеркалирующий агент
УФ-излучение
Формирование пиримидиновых димеров
Гамма-излучение
Делеции оснований, одноцепочечные
разрывы, сшивки ДНК, хромосомные
разрывы.

8. 5-Бром урацил

9.

10. Мутагены

11. Тиминовые димеры

12. Репарация ДНК

• Клетки имеют механизмы исправляющие повреждения ДНК.
• Эксцизионная репарация – исправляет повреждения одной из
цепей (пиримидиновые димеры, АР-сайты и т.д.), использует
вторую цепь в качестве матрицы для заполнения пробелов.
• Фотореактивация в ответ на возникновение повреждений
(пиримидиновых димеров).
• Репарация неспаренных нуклеотидов (mismatch repair).
• Рекомбинационная
неповрежденная цепь).
репарация
• SOS-репарация.
При
множественных
останавливается синтез ДНК.
(используется
повреждениях

13.

14. Эксцизионная репарация оснований

15. Рекомбинационная репарация

Рекомбинационн
ая репарация

16. Репарация ДНК

SOS-репарация.
• При
множественных
повреждениях
останавливается
репликация ДНК. Это вызывает активацию регулона
содержащего до 20 генов, участвующих в процессе репарации.
• Синтез ДНК при SOS-репарации подвержен ошибкам что
приводит к повышению частоту мутаций (непрямой мутагенез).
Возможно
это
увеличивает
частоту
положительных,
адаптивных мутаций в популяции бактериальных клеток.

17. Рост генетического разнообразия

Рекомбинация.
• Генетический материал разных молекул ДНК комбинируется
в гибридной молекуле ДНК.
• У эукариот – рекомбинация в мейозе. У прокариот –
рекомбинация 3 типов, по молекулярным механизмам схожа с
рекомбинацией эукариот.
Горизонтальный перенос генов.
• Конъюгация.
• Трансформация.
• Трансдукция.

18. Рекомбинация у прокариот

• Гомологичная рекомбинация. Реципрокный обмен участками
хромосом
с
аналогичными
нуклеотидными
последовательностями. Возможен нереципрокный обмен с
короткими участками ДНК.
• Сайт-специфическая рекомбинация. Интеграция многих
вирусных геномов. Донор имеет небольшой участок,
гомологичный ДНК хозяина.
• Транспозиция. С участием мобильных элементов генома.

19. Гомологичная рекомбинация

20. Нереципрокная гомологичная рекомбинация

21. Транспозиция

• Рекомбинация не зависящая от гомологии участков ДНК.
• Происходит во многих сайтах генома.
• Происходит с участием мобильных элементов генома –
транспозонов.
• Мобильные элементы могут
хромосомной и нехромосомной ДНК.
перемещаться
между
• Мобильные элементы внедряются в геном хозяина, меняя
генную структуру или подчиняя экспрессию генов новым
регуляторным элементам.

22. Транспозоны

Транспозоны:
• Инсерционные (IS);
• Составные (Tn) ;
• Репликативные.
Инсерционные и Составные перемещаются путем обычной
транспозиции (вырезать-вставить). Транспозаза катализирует
вырезание, участок опознавания составляет 5-9 п.н.
Репликативные
транспозиции.

посредством
репликативной

23. Инсерционные транспозоны (IS)

• Открыты в 1970г. П.Сталинжером, Г.Сэдлером и
Дж.Шапиро. Обычно несколько is-элементов содержиться в
бактериальной хромоосмею Размеры 750-1550 п.н.
• На концах инвертированные последовательности (IR)
необходимые для переноса. В центральной части ген
транспозазы, необходимый для распознавания is-элементов и
взаимодействия с is-элементами в процессе перемещения.

24. Составные транспозоны

• Содержат
дополнительные
гены
(устойчивости
антибиотикам
или
токсинам),
фланкированные
последовательностями.
к
IS
• Частота перемещения зависит от типа транспозона.
Считается, что они произошли от 2 ассоциированных
инсерционных транспозона, включая область кодирующих
генов между ними.

25. Репликативный транспозон

• Перемещаются посредством механизма репликативной
транспозиции. Процесс катализируется белком ресольвазой
(сайт-специфическая рекомбинация).
• Исходный транспозон остается в
реплицируясь на участке ДНК-мишени.
исходном
сайте,

26. Простая транспозиция

27.

28. Функции транспозонов

• Могут встраиваться в гены, вызывая мутации
стимулируя хромосомные перестройки, делеции.
или
• Могут переносить стоп-кодоны либо промоторные участки,
что влияет на транскрипцию или трансляцию гена-мишени.
• Часто перемещаются между плазмидами, которые могут
содержать несколько транспозонов.
• Могут перемещаться между плазмидами и хромосомами,
создавать плазмиды устойчивости, содержащие несколько
генов устойчивости к антибиотикам.

29. Плазмиды

Плазмиды
реплицируются
независимо
от
хромосомы,
могут
существовать
в
большом количестве в
клетке.
Могут
содержать мобильные
элементы
(транспозоны),
способные переходить
от
плазмиды
к
хромосоме и между
плазмидами.
1 – бактериальная хромосома, 2 – плазмиды, 3 –
деление, 4 – ДНК с включенным материалом плазмид

30. Плазмиды

• Небольшие молекулы ДНК (от 1 000 п.н. до неск. сот тыс.
п.н.), способные к самостоятельной репликации (репликон).
• Существуют
хромосом.
в
свободном
состоянии
или
в
составе
• Эписомы – плазмиды способные к обратимой интеграции в
хромосому.
• Крупные плазмиды, содержащие
хозяйства» – называют хромосомами.
гены
«домашнего
• Плазмиды состоят из модулей: обязателен репликативен,
другие опциональны.

31. Плазмиды

Плазмиды
способны
переносить
генетический
материал при конъюгации
бактериальных клеток (Fплазмиды). В их состав
входят гены белков пилей и
другие, всего до 14 генов.
Мобилом – мобильные
генетические
элементы
клетки.
В плазмидах переносятся
гены
деградации
ксенобиотиков
и
азотфиксирующих
ферментов.

32.

33. Структура F-плазмиды

34. Горизонтальный (латеральный) перенос генов

Конъюгация.
• Прямой перенос ДНК во время временного физического
контакта клеток.
Трансформация.
• Перенос свободных молекул ДНК.
Трансдукция.
• Перенос молекул ДНК с участием бактериальных вирусов.

35. Горизонтальный (латеральный) перенос генов

• Перенос генов между 2 прокариотическими организмами.
Важный механизм увеличения генетического разнообразия у
прокариот.
• Часть геном – экзогенот переноситься от донора к
реципиенту и интегрируется в эндогенот. Мерозигот
временное диплоидное состояние части наследственного
материала прокариот.
• Бактерии
способны
обмениваться
участками
наследственного материала, в том числе генами устойчивости к
антибиотикам.
Обмен
может
происходить
между
непатогенными и патогенными формами.

36. Образование мерозигот

37. Конъюгация бактерий

• Конъюгация – перенос генетического материала между
бактериальными клетками при помощи прямого клеточного
контакта.
• Включает F-фактор (F-плазмиду), половые пили и систему
секреции IV типа.
• При F+ X F- конъюгации, F-плазмида существует независимо
от бактериальной хромосомы и переноситься в клетку
реципиента целиком, гены донора обычно не переносятся.
• При Hfr-конъюгации, происходит частичная репликация
донорской ДНК, переноситься только цепь ДНК (Hfr),
содержащая гены плазмиды и хозяина, F-плазмида
интегрирована в хромосому хозяина и не переноситься
целиком.

38. Эксперимент Д. Ледерберга и Э. Тэйтума (1946), доказавший явление конъюгации

39. Эксперимент Б. Дэвиса, показавший роль физического контакта при конъюгации

40. Конъюгация E.coli

41. F+ X F- конъюгация

F+ X F- конъюгация

42. F+ X F- конъюгация

43. Инсерция F-плазмиды в бактериальную хромосому с образованием Hfr-клетки

44. Конъюгация Hfr-клетки с новым реципиентом

45. Трансформация

• Впервые явление трансформации описано Ф. Гриффитом в
1928.
• Перенос ДНК без участия дополнительных структур.
Внесенная ДНК включается в геном и может наследоваться.
• Часто фрагменты ДНК выходят во внешнюю среду при
лизисе клетки, при попадании в «компетентную» клетку
вызывают трансформацию. Средняя частота трансформации
«компетентных клеток» 10-3.
• Компетентность зависит от размеров популяции, при
достижении больших размеров 107-108 кл./мл., на поверхности
экспрессируется белок отвечающий за трансформацию.
Происходит в почвенных и водных экосистемах.

46. Трансформация фрагментами ДНК и плазмидами

47. Трансформация на примере S.pneumoniae

48.

49. Бактериальная трансформация

50. Перенос ДНК в клетку

• Для переноса ДНК через клеточные оболочки имеются
сложные системы, включающие ферменты нуклеазы,
транслоказы и другие, а также некоторые структурные белки
образующие канал для перемещения ДНК.

51. Трансдукция

• Трансдукцию осуществляют бактериофаги, переносящие
невирусную информацию. Фаги – вирусы бактерий, используют
аппарат синтеза белка и репликации ДНК клетки.
• Ошибки в жизненном цикле фага могут приводить к
попаданию в капсид вируса фрагментов ДНК бактерии.
• Вирулентные фаги вызывают лизис клетки после
увеличения количества фаговых частиц в клетке – литический
цикл.
• Умеренные фаги внедряются в геном хозяина, совместно
реплицируются длительное время – лизогенный цикл.
• Профаг – внедренный в хромосому геном вируса.

52.

53. Общая трансдукция

• Описана в 1951г. Дж.Ледербергом и Н.Циндером.
• Неспецифический перенос разнообразных генов хозяина.
• Во время лизиса клетки-хозяина обломки ДНК хозяина (0,5 –
2,5 %) укладываются под капсидную оболочку вместе с ДНК
фага.
• Характерна для литических циклов. Наследование
внесенной ДНК происходит только при условии успешной
гомологичной рекомбинации с ДНК клетки-хозяина.
• Если ген не может быть интегрирован в геном хозяина –
абортивная трансдукция.

54. Общая трансдукция

55.

Общая трансдукция

56.

57. Специфическая трансдукция

• Перенос ограниченного числа генов, расположенных в
участке включения ДНК фага в хромосому бактерии.
• Происходит в результате ошибки лизогенного цикла, когда
профаг покидает хромосому хозяина, вырезание может быть
неточным, захватывая участок ДНК хозяина (5-10%).
• Наиболее известный пример – фаг лямбда, который
размножается 2 способами: при литическом цикле присутствует
в виде автономной молекулы ДНК, которая обеспечивает синтез
фаговых частиц. При лизогенном цикле ДНК фага
интегрирована в хромосому и реплицируется пассивно.
• Дефектный фаг может содержать гены, следующие на
хромосоме за точкой внедрения и профагом.

58. Специфическая трансдукция

59. Специфическая трансдукция

60.

61. Опыт Джона Кернса (1988 г.)

В работе использовался мутантный штамм lac- бактерий,
неспособных к метаболизму лактозы, такие бактерии не
растут на средах, содержащих лактозу в качестве
единственного источника энергии. При пересеве таких
бактерий на среду с лактозой вырастают только
бактерии -ревертанты lac+.
После пересева и суточного роста наблюдалась картина,
аналогичная опыту Лурии и Дельбрюка, однако через 2 и 3
суток роста количество устойчивых колоний значительно
возросло.

62. CRISP-кассеты

• В 2005 году сотрудниками Danisco Рудольфом
Барангу и Филиппом Хорватом проводились
опыты с культурами Streptococcus thermophilus.
Эти работы имели практическую цель получить
штаммы
бактерии,
применяемой
для
производства молочных продуктов, устойчивой к
бактериофагам.
• В результате были открыты CRISP-кассеты – участки
ДНК, одержащие короткие фрагменты (спейсеры),
схожие у бактерии и фага. Считается, что набор
спейсеров отвечает за способность фага поражать
бактерию.

63. Спасибо за внимание

English     Русский Правила