Асептика. Источники хирургической инфекции

1.

Асептика. Источники хирургической
инфекции.
• Асептика (а – без, septicus – гниение)
– комплекс мероприятий, направленных
на предупреждение попадания
инфекции в рану, в кровь, в организм
больного.
• Эти мероприятия осуществляются путем
использования организационных
мероприятий, активных
обеззараживающих химических
веществ и физических факторов.

2.

Два основных принципа асептики:
• все, что соприкасается с раной, кровью
человека или слизистыми оболочками с
возможной травматизацией последних
должно быть стерильно;
• всех хирургических больных
необходимо разделять на два
потока: «чистые» и «гнойные».

3.

• Внедрение асептики в хирургическую
практику (наряду с обезболиванием и
открытием групп крови) относится к одним из
фундаментальных достижений
медицины XIX века.
• Профилактические мероприятия проводятся
исходя из положения, что каждый пациент
расценивается как потенциальный источник
гемоконтактных инфекций (гепатит В,С, ВИЧ
и другие).

4.

Профилактика профессионального
инфицирования ВИЧ- инфекции
• Профилактические прививки против гепатита В.
• Перед любой работой с травмоопасными
инструментами заранее спланировать свои действия,
в том числе касающиеся их обезвреживания .
• Не надевать колпачки на использованные иглы .
• Без промедления сообщать обо всех случаях
травматизма при работе с пациентами, иглами,
другими острыми предметами, инфицированными
субстратами (в том числе при работе с
медицинскими отходами).
• Использовать средства индивидуальной защиты
(очки, экраны, фартуки, перчатки и т.д.)

5.

В каждом лечебно – профилактическом
учреждении ведется учет случаев получения
при исполнении профессиональных
обязанностей травм, микротравм персоналом,
аварийных ситуаций с попаданием крови и
биологических жидкостей на кожу и
слизистые.

6.

Журнал аварийных ситуаций
Дата _________время______час._______мин.
Ф.И.О. медицинского работника________________________________________
Должность медицинского работника_____________________________________
Проводимая манипуляция ______________________________________________
Краткое описание аварии________________________________________________
Предпринятые меры______________________________________________________
Даты обследования на ВИЧ-инфекцию, гепатиты В, С и результаты в день травмы,
3,6,12 месяцев)
Подпись зав. подразделением (в ночное время дежурного врача)_________________
Подпись старшей медицинской сестры______________________________________
Данные о пациенте, при оказании помощи которому произошла авария: Ф.И.О.
_________________________________________________________________
Дата рождения___________________________________________________________
Домашний адрес (телефон)________________________________________________
ВИЧ –статус (диагноз ВИЧ – инфекции подтвержден, дата подтверждения, стадия
ВИЧ- инфекции, принимает ли АРВТ, уровень РНК в плазме, количество СД4, СД8 –
лимфоцитов, их отношение;
ВИЧ –статус неизвестен: кровь на антитела к ВИЧ взята, но результат не получен,
кровь на антитела не взята (указать причину)
Получен положительный результат экспресс- теста на антитела к ВИЧ
(отрицательный результат экспресс-теста)
Вирусные гепатиты В и С: кровь на наличие гепатитов В, С – дата, результат)

7.

После аварийной ситуации в кротчайшие сроки
необходимо обследовать на ВИЧ-инфекцию и
вирусные гепатиты В, С лицо, которое может
являться потенциальным источником
заражения, и контактировавшее с ним лицо.
Обследование на ВИЧ-инфекцию
потенциального источника проводят экспресс
методом с обязательным последующим
тестированием на ВИЧ методом ИФА.
Образцы крови пациента и контактного лица
передают в лабораторию для хранения в
течение 12 месяцев.

8.

При положительном ВИЧ –статусе пациента
пострадавшему медработнику проводят
курс постконтактной профилактики.
Прием антиретровирусных препаратов
должен быть начат в течение первых 2-х
часов после аварии, но не позднее 72 часов.

9.

• Венгерский акушер Игнац Земмельвейс в
1847 году предположил возможность
развития послеродовой горячки вследствие
занесения студентами и врачами, при
вагинальном исследовании, «трупного яда».
• Земмельвейс предложил перед
внутренним исследованием обрабатывать
руки хлорной известью и добился
феноменальных результатов.

10.

Открытие Луи Пастера (1863)
• Научное заключение Луи Пастера о роли
микроорганизмов в возникновении
процессов брожения и гниения явилось
базой для разработки методов
асептики .

11.

Э.Бергман основоположник
асептики.
В 1890 году в Берлине на Х Международном
конгрессе хирургов Бергман доложил об
операциях, проведенных в асептических
условиях.
Он и его ученик Карл Шиммельбуш
использовали для стерилизации
перевязочного материала высокую
температуру.

12.

Коробка Шимельбуша ( Бикс)

13.

ИСТОЧНИКИ ХИРУРГИЧЕСКОЙ
ИНФЕКЦИИ
I. Экзогенная инфекция
- воздушно-капельная
-воздушно-пылевая
- контактная (инструменты, бельё,
перевязочный материал, катетеры ,руки
хирурга),
- имплантационная (шовный и
пластический материал, стенты,протезы,
дренажи).

14.

ИСТОЧНИКИ ХИРУРГИЧЕСКОЙ
ИНФЕКЦИИ
2. Эндогенная инфекция (попадает в рану из
организма самого больного):
- инфекция с кожи больного
- инфекция желудочнокишечного тракта.
- инфекция их верхних дыхательных
путей
- инфекция из очагиов хронической и
острой инфекции.

15.

Внутрибольничная инфекция
(ВБИ, госпитальная, нозокомиальная
инфекция).
ВБИ – это любое клинически выраженное
заболевание микробного происхождения,
поражающее больного в результате
его госпитализации или посещения
лечебного учреждения с целью
лечения.

16.

По каждому случаю внутрибольничного
инфицирования осуществляется комплекс
профилактических и противоэпидемических
мероприятий по локализации очага и
недопущению дальнейшего распространения
инфекции, составляется «Акт
эпидемиологического расследования»

17.

Степени категории риска переноса
ВБИ:
• Низкий (полукритические предметы) –
предметы, контактирующие со здоровой и
интактной кожей, нет контакта со слизистой.
• Средний риск (некритические предметы) –
оборудование, контактирующее со слизистыми
или поврежденной кожей: дыхательное и
анестезиологическое оборудование.
• Высокий риск (критические предметы) –
проникающие в стерильные ткани, полости
тела, сосудистые системы (инструменты,
имплантанты, иглы, сосудистые катетеры).

18.

Дезинфекция – уничтожение патогенных
и условно-патогенных микроорганизмов на
изделиях медицинского назначения и
объектах внешней среды в окружении
больного.
• Цель дезинфекции:
• уничтожение возбудителей инфекционных
заболеваний на объектах внешней среды палат и
функциональных помещений отделений ЛПУ, на
медицинском оборудовании и инструментарии;
защита от возможного инфицирования персонала,
обрабатывающего медицинский инструментарий
или аппаратуру после их использования.

19.

• Дезинфекция низкого уровня
уничтожает большинство бактерий, но не
может быть надежным методом уничтожения
таких микроорганизмов, как например,
микобактерии туберкулеза , вирусы или
грибы.
• Дезинфекция высокого уровня должна
уничтожать все микроорганизмы за
исключением спор бактерий.

20.

Эффективность дезинфекции зависит:
• Биологической устойчивости
микроорганизмов к различным
дезинфектантам.
• Массивности микробного обсеменения
объекта.
• Характера обрабатываемых материалов.
• Свойств дезинфектантов.
• Способа обработки, времени
воздействия(экспозиции).

21.

Виды дезинфекции
• Профилактическая
• Очаговая
• Текущая
• Заключительная

22.

Профилактическая дезинфекция.
• Проводится с целью уничтожения
возбудителей,которые могут накапливаться
во внешней среде, для предотвращения
возникновения инфекционных заболеваний.
( очага инфекции нет)

23.

Очаговая.
• Проводится в случае возникновения
инфекционного заболевания или при
подозрении на него.
• Очаговая дезинфекция назначается во всех
случаях при наличии возбудителя.

24.

• ТЕКУЩАЯ (производится многократно в
условиях дома или ЛПУ в окружении
больного)
• ЗАКЛЮЧИТЕЛЬНАЯ (однократно на
дому после госпитализации пациента, в
стационаре – после выписки)

25.

Методы дезинфекции
• Механический
• Химический
• Физический
• Комбинированный

26.

Механический метод
• Вытряхивание
• Чистка предметов
• Стирка и мытье
• Фильтрация воды
• Вентиляция
• Проветривание

27.

Физический метод
1. Действие высоких температур
• прокаливание
• кипячение
• действие горячего воздуха
2.Действие лучевой энергии
• ультрафиолетовое излучение
• ультразвук

28.

Химический метод
Применение химических препаратов, которые
оказывают на микроорганизмы бактерицидное,
но не спороцидное действие.
Для приготовления растворов используются
полиэтиленовые емкости, закрытые
крышками.
Растворы необходимой концентрации готовятся
путем разбавления водой жидкого или
порошкообразного концентрата.
Некоторые средства могут использоваться
многократно до изменения цвета или
появления хлопьев или налета.

29.

• С дезинфектантами работают только в
средствах индивидуальной защиты.
• Дезинфектанты разводят в специальных
комнатах – санитарных комнатах.
• Дезинфектанты разводят в специальной таре,
промаркированной, с плотной крышкой.
• Дезинфектанты хранят в фирменной упаковке.
Пересыпание, переливание недопустимо!
Дезинфектанты должны храниться в
недоступном для пациента месте.

30.

1. При попадании на кожу дезсредств
поражённые места немедленно промываются
проточной водой (15 мин.), затем кожа
смазывается смягчающим кремом.
2. При отравлении через дыхательные пути
пострадавшего немедленно выводят из
помещения на свежий воздух или в хорошо
проветриваемое помещение. Полость рта и
носоглотку необходимо промыть водой.
3. При попадании дезсредств в глаза, их
немедленно промывают проточной водой в
течение 10 мин, затем
закапывают раствор сульфацила натрия
.консультация офтальмолога обязательна.

31.

Итак…
• Дезинфекции в ЛПУ подлежат те объекты,
которые могут иметь эпидемиологическое
значение в распространении ВБИ:
поверхности в помещениях (пол, стены,
дверные ручки), поверхности приборов,
оборудования, предметы ухода за
больными, ИМН, воздух, посуда, белье,
выделения пациентов.

32.

При попадании в желудок необходимо выпить
несколько стаканов воды с 10-20
измельченными таблетками активированного
угля и обратиться к врачу. Рвоту не вызывать!

33.

Обработка инструментов
Предстерилизационной очистке
подвергаются все изделия медицинского
назначения перед их стерилизацией с
целью удаления белковых, жировых
загрязнений и остаточных количеств
лекарственных препаратов.
Последующая стерилизация становится
эффективней, снижается риск пирогенных
реакций.

34.

Этапы ПО:
• Замачивание в моющем комплексе при полном
погружении в разобранном виде с обязательным
заполнением всех каналов и полостей на 15 минут.
• Мойка каждого изделия при помощи ерша, ватномарлевого тампона или щетки 1-1,5 мин.
• Ополаскивание проточной водой (в зависимости от
СМС от 1,5 до 3 мин. каждое изделие)
• Ополаскивание дистиллированной водой 0,5 мин
каждое изделие.
• Сушка горячим воздухом при t 80-85 град или
открытым способом, до полного исчезновения
влаги.

35.

Контроль за качеством
предстерилизационной очистки
• Амидопириновая и азопирамовая пробы - на
наличие остатков белка (кровь,гной)
• Фенолфталеиновая проба - на остаточные
количества щелочных компонентов.
• Наличие жира определяют путем постановки
пробы с Суданом III.
• Контролю подвергают 1% изделий каждого
наименования, но не менее 3-5 единиц.
• При выявлении положительной пробы на белок или
моющее средство – всю группу контролируемых
изделий подвергают повторной обработке.
• Запрещено наносить раствор на горячие предметы.
• 2-3 капли реактива наносят на изделие.
• Экспозиция 1 мин (!).

36.

• Стерилизация (лат. sterilis – бесплодный) –
полное освобождение какого-либо
предмета от микроорганизмов путем
воздействия на него физическими или
химическими факторами.
• Методы и средства стерилизации должны
обеспечивать полное уничтожение всех
микроорганизмов.

37.

Стерилизация
Обеспечивает гибель на стерилизуемых
изделиях вегетативных и споровых форм
патогенных и непатогенных микроорганизмов.
Стерилизации должны подвергаться все
изделия, соприкасающиеся с раневой
поверхностью, контактирующие с кровью или
инъекционными препаратами, а также
медицинские инструменты, которые в
процессе эксплуатации соприкасаются со
слизистой оболочкой и могут вызвать ее
повреждение.

38.

• Физические и химические методы
стерилизации должны отвечать
следующим требованиям:
• уничтожать микроорганизмы и их споры;
• быть безопасными для больных и
медицинского персонала;
• не ухудшать рабочие свойства изделий.
Выбор того или иного способа
стерилизации зависит, прежде всего, от
свойств изделия.

39.

Физические методы стерилизации
1. Стерилизация паром под давлением
(автоклавирование).
В автоклаве происходит нагревание
воды при повышенном давлении.
Это повышает точку кипения воды и
температура пара поднимается до
132,9°С (при давлении 2 атм).
Некоторые споры микроорганизмов
(погибают при температуре 120°С).

40.

Стерилизация перевязочного материала и
белья
• Перевязочный материал: марлевые
шарики, тампоны, салфетки, бинты,
турунды.
• Для удобства подсчета шарики
укладывают по 50-100 штук в марлевые
салфетки, салфетки и тампоны связывают
по 10 штук.
• После использования перевязочный
материал уничтожается.

41.

42.

Виды укладки биксов
• универсальная укладка – Набор материала и
белья достаточен для проведения небольшой стандартной
операции. Бикс условно делят на секторы, каждый из них
заполняются определенным видом материала: в один
сектор помещают салфетки, в другой – шарики, в третий –
тампоны и т.д.
• целенаправленная укладка – предназначена для
проведения типичных процедур, манипуляций и малых
операций (трахеостомии, катетеризации подключичной
вены, диагностической лапароскопии и т.п.). В бикс
укладывают все необходимое для данной манипуляции.
• видовая укладка – используется в операционных, где
необходимо большое количество стерильного материала.
При этом в один бикс укладывают хирургические халаты,
в другой простыни, в третий – перевязочный материал.

43.

Правила укладки перевязочного
материала и операционного белья в биксы
• материал должен укладываться неплотно
для проникновения пара во время
стерилизации в центр бикса:
• при универсальной и целенаправленной
укладке материал должен быть заложен в
бикс в такой последовательности, чтобы
можно было достать необходимый
предмет, не задевая рядом лежащий
(вертикально).
• индикаторы контроля стерильности
должны находиться сразу под крышкой и в
глубине бикса и на дне.

44.

Что стерилизуется методом
автоклавирования?
• Паровой метод стерилизации применяют для
изделий из коррозийностойких металлов,
стекла, текстиля, резины. Стерилизацию
производят насыщенным паром под
избыточным давлением в паровом
стерилизаторе - автоклаве.
• Режимы стерилизации в автоклаве:
1,1 атм (t –119,6°С) – 1 час;
1,5 атм (t - 126,8°С) – 45 мин;
2 атм (t - 132,9°С) – 30 мин.

45.

46.

47.

48.

49.

50.

Физические методы стерилизации
продолжение
2.Стерилизация горячим воздухом (сухим
жаром).
Осуществляют в специальных аппаратах –
сухожаровых шкафах.
Используют для стерилизации
металлических инструментов (кроме
режущих, т.к. они при этом
тупятся) и предметов, выполненных из
огнеупорного стекла (с меткой «200°С»).

51.

Сухожаровая стерилизация
Воздушным методом стерилизуют
хирургические, гинекологические,
стоматологические инструменты, детали
приборов и аппаратов, в том числе
изготовленные из коррозионнонестойких
металлов, изделия из силиконовой резины .
Стерилизацию осуществляют при
закрытой дверце при
температуре 160 °С или 180 °С.
Открывать дверцу шкафа можно только
при остывании его до 60-70°С.

52.

Сухожаровой шкаф

53.

Лучевая стерилизация
• Стерилизация инструментов и
материала осуществляется в герметичных
упаковках в заводских условиях
(требуется специальная защита от
радиации). При целостности упаковки
стерильность предметов сохраняется до 5
лет.
• Наибольшее применение в настоящее время
получила γ - стерилизация.
Используют Со60 и Cs137

54.

Химические методы стерилизации
(холодная стерилизация)
Газовая стерилизация.
Осуществляют в специальных герметичных
камерах в парах формалина или окиси
этилена.
Экспозиция инструментов - 6-48 ч.
Достоинство метода – в минимальном
отрицательном влиянии на инструменты,
поэтому используется чаще для стерилизации
дорогостоящей и хрупкой оптической
аппаратуры.
Недостаток – длительность обработки.

55.

Химические методы стерилизации
(холодная стерилизация)
• Осуществляется в стерильных условиях.
Помещение для стерилизации должно быть
оснащено вытяжным шкафом, бактерицидным
облучателем. Медсестра работает в стерильной
спецодежде, перчатках, респираторе.
• Стерилизация растворами антисептиков не
приводит к затуплению инструментов, в связи, с
чем применяется для стерилизации режущего
инструментария (скальпелей, ножниц).
• Для стерилизации оптических инструментов
подбираются препараты, обладающие сильными
антисептическими свойствами и не оказывающие
повреждающего воздействия на эндоскопы
(средства, содержащие глутаровый, ортофталевый
альдегиды, надуксусную кислоту и др.)

56.

Факторы, определяющие эффективность
стерилизации
Воздушный: температура, экспозиция.
Паровой: температура, давление, экспозиция,
степень насыщенности пара.
Химический: концентрация активно
действующего вещества в растворе,
экспозиция.

57.

Контроль стерильности материала
• Прямой метод – бактериологический
посев – 2 раза в месяц (смывы, воздух),
наиболее точный метод.
Однако результат будет готов лишь
через несколько суток, а материал должен
быть использован в течение смены
после открывания бикса. Поэтому такой
метод применяется лишь как плановое
контрольное исследование

58.

• Непрямой метод
Используется при термических способах
стерилизации.
Эти методы основаны на изменении цвета
индикатора при достижении определенной
температуры.
• ампулы (зависимость температуры плавления
кристаллических веществ при определенной
температуре)
• бумажные индикаторы (изменение цвета
вещества при высокой температуре).