Дезинфекция и стерилизация

1. ДЕЗИНФЕКЦИЯ и СТЕРИЛИЗАЦИЯ

ДЕЗИНФЕКЦИЯ И
СТЕРИЛИЗАЦИЯ

2. Введение

Организация дезинфекционностерилизационных мероприятий в медицинских
учреждениях является одним из главных этапов
в профилактике внутрибольничных инфекций
(ВБИ). За последнее десятилетие
модернизируется медицинская технология, в
деятельности лечебной сети применяются
современные приборы, эндоскопическое и
другое оборудование, которое требует высоких
технологий дезинфекции и стерилизации.
Широко используются одноразовые
медицинские инструменты и мягкий инвентарь,
упакованный в специальные стерильные
упаковки, способные сохранять стерильность
длительное время.

3. Деконтаминация

— это процесс уничтожения
микроорганизмов в целях обеспечения
инфекционной безопасности.
Деконтаминация изделий медицинского
назначения складывается из дезинфекции,
предстерилизационной обработки и
стерилизации

4.

Дезинфекция – наука, которая
разрабатывает методы, способы и средства
уничтожения патогенных микроорганизмов
на путях передачи их от источника
инфекции к восприимчивому
макро.организму

5. ЗАДАЧА ДЕЗИНФЕКЦИИ

Предупреждение или ликвидация
процесса накопления, размножения и
распространения возбудителей
заболеваний путем их уничтожения или
удаления на объектах и предметах.
то есть, дезинфекция обеспечивает
прерывание путей передачи заразного
начала от больного к здоровому.

6. ЦЕЛЬ ДЕЗИНФЕКЦИИ

Уничтожение возбудителей инфекционных
заболеваний(кроме их спор) с объектов
внешней среды, предметов ухода за
больными, с медицинского оборудования и
инструментария;
На прерывание эпидемического процесса
путем воздействия на механизм передачи
возбудителя (факторы и пути передачи);
Различают виды дезинфекции:
профилактическая, текущая и
заключительная.

7.

ВИДЫ ДЕЗИНФЕКЦИИ
ПРОФИЛАКТИЧЕСКАЯ
(приотсутствии очага инфекции)
ОЧАГОВАЯ
(ПРИНАЛИЧИИ ОЧАГА ИНФЕКЦИИ)
Проводится как
предупредительная
мера при отсутствии
выявленного источника
инфекции для защиты
человека от возможного
заражения
ПРОТИВОЭПИДЕМИЧЕСКАЯ
(проводится в случ.
Возникновения
инф.заболев.
Или при подозрении на него)
Текущая
В зависимости от
времени
проведения
Текущая
(производится
многократно
в условиях ЛПО или)
Заключительная
(производится однократно)

8. Заключительная дезинфекция проводится:

• Домашних очагах, санитарно-неблагоустроенных,
многонаселенных коммунальных квартирах, при наличии
семейной очаговости;
Домашних очагах, где имеются дети раннего возраста или
по заявке врача эпидемиолога;
Общежитиях и гостиницах;
Детских дошкольных, специализированных учреждениях,
школах-интернатах при возникновении групповых
заболеваний;
Школах при возникновении групповых заболеваний;
ЛПО, только по заключению врача эпидемиолога;
На пищеблоках организованных коллективов,
предприятиях общественного питания, продукция которых
послужила причиной возникновения групповой
заболеваемости сальмонеллезом, кишечным иерсиниозом
и т.д.
Камерная дезинфекция.

9. ПРОФИЛАКТИЧЕСКАЯ ДЕЗИНФЕКЦИЯ

проводится при отсутствии выявленного
источника возбудителя инфекции с целью
предупреждения накопления патогенных и
условно-патогенных микроорганизмов на
объектах внешней среды, а также их
переносчиков (насекомые, грызуны и др.).

10. Текущая дезинфекция

Цель: является немедленное уничтожение
возбудителя инфекции после выведения
из организма больного или носителя.
Проводится в очаге в течение всего
времени пребывания в нем источника
возбудителя инфекции.

11. Методы дезинфекции

Механический
Основан на удалении
возбудителей
инфекционных
болезней с предметов
(полного удаления не
достигается,
но
снижается
концентрация):
вытряхивание,
мытье
рук,
выколачивание,
сквозное
проветривание,
протирание
влажной
ветошью,
влажная
уборка,
стирка,
обмывание
Физический
Основан
на
воздействии
ряда
физических факторов:
кипячение,
пастеризация,
применение
огня,
ультрафиолетовое
облучение,
воздействие
сухого
горячего
воздуха,
водного насыщенного
пара под давлением
Химический
Основан на
применении
химических
веществ
(антисепти
ков и
дезинфектантов)
способами
орошения,
протирания,
погружения или
замачивания,
засыпания сухим
препаратом
Биологический
Основан на
использовании
биологических
процессов,
протекающих в
естественных
условиях
(антагонистическ
ое действие
между
микробами)
Комбинированный
Сочетающий использование нескольких и вышеперечисленных методов (например, влажная
уборка помещений с поледующим ультрафиолетовым облучением )

12. Механические методы дезинфекции:

влажная уборка помещений и обстановки;
выколачивание одежды, постельного
белья и постельных принадлежностей;
освобождение помещений от пыли с
помощью пылесоса, побелка и окраска
помещений;
мытье рук.

13. Физические (термические) методы дезинфекции:

использование солнечных лучей;
облучение ультрафиолетовыми излучателями для обеззараживания
воздуха и поверхностей в помещениях;
кипячение в дистиллированной воде - 30 минут с момента закипания
при температуре 100°С, а с добавлением натрия двууглекислого
(питьевой соды) - 15 минут с момента закипания при полном
погружении.
воздушный метод дезинфекции (без упаковки, в сухожаровом шкафу
приТ° - 120°С, экспозиция 45 минут с момента достижения
температуры) используется, если изделия из стекла, металлов, резины,
латекса, термостойких полимерных металлов не загрязнены
органическими веществами;
паровой метод используется, если те же изделия не требуют
предварительной очистки. Дезинфицирующий агент: водяной пар под
избыточным давлением в 0,5 атм.

14. Химические методы дезинфекции:

•орошения (стен, дверей, столов для
обследования);
протирания (поверхностей двукратно с
интервалом 15 минут);
полного погружения (белья, посуды,
уборочного инвентаря, медикаментов);
засыпания (остатки крови, мочи, рвотных
масс, мокроты, испражнений).

15. ВЫБОР МЕТОДА ОБЕЗЗАРАЖИВАНИЯ

Зависит от факторов:
от материала дезинфицирующего объекта;
Числа и вида микроорганизиов,
подлежащих уничтожению;
Степени риска инфицирования больного и
персонала

16. Устойчивость микроорганизмов к дезинфекции

Бактериальные споры (Bacillus subtilis);
Микобактерии (Mycobakterium tuberklosis);
Нелипидные (маленькие вирусы;) (Polio virus);
Грибы (Trichophyton spp.);
Вегетирующие бактерии (Pseodomonas
aeruqinosa);
Липидные (среднего размера) вирусы
(ВИЧ, вирусы гепатита В).

17. Уровни дезинфекции (Е.Х. Сполдинг США)

Дезинфекция высокго уровня
Уничтожает вегетирующие бактерии, микобактерии
туберкулеза, грибы, липидные и нелипидные вирусы, не
эффективна в отношении большого числа бактериальных
спор;
Дезинфекция среднего уровня
Уничтожает вегетирующие бактерии микобактерии
туберкулеза, грибы и большинство вирусов, не
эффективна в отношении большого числа бактериальных
спор;
Дезинфекция низкого уровня
Уничтожает вегетирующие бактерии, некоторые грибы, не
эффективна в отношении микобактерий туберкулеза, а
также бактериальных спор.

18. Классификация инструментов и предметов ухода за больными (Е.Х. Сполдинг США)

Критические
Инструменты, которые вводятся непосредственно
в кровеносное русло или другие стерильные
области тела;
Полукритические
Входят в контакт с ненарушенными слизистыми
оболочками;
Некритические
Невходят в соприкосновение с пациентами, или
соприкасаются с ненарушенным кожным
покровом.

19. Требования к дезинфекционным средствам

должны быть эффективными в отношении
различных видов микроорганизмов возбудителей инфекционных и паразитарных
болезней;
малая токсичность для людей,
экологическая безопасность.

20. Требования к дезинфекционным средствам

хорошая растворимость в воде,
безопасность в отношении
обрабатываемых объектов,
простота в применении,
длительность срока хранения без
потерь активности

21. Химические группы

Катионные поверхностно-активные
вещества (ПАВ) и четвертичноаммониевых соединений ЧАС.
Хлорсодержашие средства
Альдегидсодержащие средства

22. Химические группы

Спиртсодержащие средства
Фенолсодержащие средства
Композиционные средства

23. Выбор средства

Выбор средства, его концентрации,
экспозиции зависит от многих причин:
Требуемой степени дезинфекции
Спектра и уровня чувствительности
микроба –возбудителя
Вида и объекта дезинфекции, условий
дезинфекции

24. Выбор средства

Переносимости дезинфектантов людьми и
материалами;
Стоимости дезинфекционных
мероприятий

25. Предстерилизационная очистка

является вторым этапом обработки
медицинских инструментов, которая
проводится после дезинфекции и отмывки
изделий от дезинфектанта, с целью
окончательного удаления остатков
белковых, жировых, механических
загрязнений, лекарственных препаратов и
т.д.

26. Этапы предстерилизационной очистки

1. Замачивание изделий в моющем растворе на время
определенное инструкцией к каждому конкретному
раствору или кипячение в растворе (или использование
механизированного метода с применением ультразвука);
2. Мойка каждого изделия в моющем растворе при помощи
ерша, щетки, ватно-марлевого тампона - 0,5 минут на
изделие (при ручной обработке);
3. Ополаскивание под проточной водой до исчезновения
щелочности - от 5 до 10 минут;
4. Ополаскивание (обессоливание) в дистиллированной воде
из расчета: на 2 набора инструментов - 1 литр
дистиллированной воды;
5. Сушка горячим воздухом при температуре 85-90°.

27.

Разъемные изделия подвергаются предстерилизационной
очистке в разобранном виде.
Изделия замачивают в моющем растворе при полном
погружении с обязательным заполнением каналов и полостей на
время от 15 до 60 минут в зависимости от свойств моющих
средств.
Мойку изделий осуществляют с помощью ватно-марлевого
тампона, тканевых салфеток, ершиков в том же растворе в
течение 0,5-1 минуты. Каналы и полости изделий промывают с
помощью шприца. Применение ершиков при очистке резиновых
изделий не допускается.
Альтернативными ручной предстерилизационной очистке
способами являются ультразвуковая обработка, применение
моечных машин, моечно-дезинфекционных и моечностерилизационных установок. Для механизированного способа
предстерилизационной очистки предложены различные типы
моечных машин. Они могут быть однокамерными или
многокамерными.

28. Азопирамовая проба

Ежедневно проводится в ЦСО, самоконтроль на отделении 1 раз в неделю.
Приготовить:
- 1% изделий каждого наименования, не менее 3-5 штук;
- исходный раствор азопирама, приготовленный аптекой;
- 3% перекись водорода;
- марлевые салфетки;
- стёкла с мазками крови;
- журнал контроля качества проведения
предстерилизационной обработки

29. Азопирамовая проба

Действия:
1. Приготовить рабочий раствор азопирама:
смешать равные объёмы (в пропорции 1:1) исходного
раствора азопирама и 3% перекиси водорода
(полученный раствор годен в течение 1-2 часов).
2. Проверить активность рабочего раствора, капнув
несколько капель на стекло с мазком крови.
3. Холодные изделия (не выше 25*С) протереть
салфеткой с раствором или нанести 3-4 капли
рабочего раствора пипеткой, особенно в местах
соединения.
4. Экспозиция 0,5- 1 минута

30. Азопирамовая проба

Чтение пробы:
- розово-сиреневое окрашивание говорит об
остатках крови;
- бурое окрашивание говорит о наличии
окислителей, моющего средства, ржавчины.
6. Независимо от результатов пробы изделия
промыть водой или спиртом.
7. При положительной пробе вся партия
изделий подлежит повторной обработке.
8. Запись результатов в журнале.

31. СТЕРИЛИЗАЦИЯ: Определение

Совокупность физических и химических
способов полного освобождения объектов
внешней среды от вегетативных и споровых
форм микроорганизмов.

32. СТЕРИЛИЗАЦИЯ предусматривает:

Предупреждение заноса микроорганизмов
в организм человека при медицинских
вмешательствах.
Исключение контаминации
питательных сред и культур клеток
Предупреждение микробной
биодеградации материалов, в т.ч.
лекарственных и диагностических

33. Методы стерилизации:

Физический
Паровая стерилизация
Воздушная стерилизация ( горячим воздухом)
Химический
Газовая стерилизация
Стерилизация химическими растворами.
Ионизируюшие излучения радиоактивным
способом
Импульсные токи (УВЧ, СВЧ).

34. Выбор стерилизующих средств

Особенности стерилизуемых изделий (материал,
формы, размер и др.);
Использовать наиболее эффективный, экономичный и
наименее токсичный процесс;
Особенности стерилизующих средств ( действующий
агент и его концентрация, доза, способы применения,
токсичность, влияние на стерилизуемые изделия и
окружающую среду)
Очистка - является наиболее важным элементом
стерилизационного процесса декоментации;
Надлежащий контроль за правильностью выбора
процесса декоментации;
Качество выполнения стерилизации
Соответствующие меры по устранению выявленных
недостатков.

35. СТЕРИЛИЗАЦИЯ: технологические этапы

Дезинфекция ( при микробной
контаминации);
Предстерилизационная очистка;
Сборка, группировка и размещение
материалов в контейнере и стерилизаторе;
Собственно стерилизация;
Сушка ( при влажных методах стерилизации);
Контроль за стерилизацией;
Хранение стерилизованных материалов.

36. Требования к проведению эффективной паровой стерилизации

правильная упаковка и укладка в
стерилизатор;
удаление воздуха из стерилизационной
камеры;
поддержание требуемых температур и
сроков экспозиции в соответствии с
установленными режимами для того или
иного материала.

37. Паровой метод

Паровой метод проводится в паровом стерилизаторе
(автоклаве) с соблюдением следующих режимов:
• 120 градусов - 1,1 атм. - 45 минут ( режим щадящий для
изделий из резины, латекса и отдельных полимерных
материалов);
• 132 градуса - 2,0 атм. - 20 минут (для изделий из
коррозионностойкого металла, стекла, резины).
Паровым методом стерилизуют общие хирургические и
специальные инструменты, детали приборов, стекла,
перевязочный материал, изделия из резины, латекса и
отдельных видов пластмасс.

38. Применяемые упаковки и сроки сохранения стерильности:

2-х слойная бязевая (упаковочный материал используют
однократно);
биксы с фильтром - 20 суток;
бумажные, комбинированные и пластиковые
стерилизационные упаковочные материалы
Комбинированные прозрачные упаковки изготавливаются из
прозрачной многослойной пленки и специальной медицинской
бумаги. Обладают превосходной проницаемостью для пара и
газа и служат отличным препятствием для бактерий.
Виды комбинированной упаковки: пакеты и рулоны, плоские и со
складкой, а также самогерметизирующиеся пакеты.

39. Применяемые упаковки и сроки сохранения стерильности:

Для контроля качества работы автоклава
применяются следующие тест-индикаторы:
термовременная лента ИС 120/ 45, 132/ 20;
бензойная кислота (при правильно
приведенной стерилизации кислота
становится фиолетового цвета,
закладывается в каждую упаковку по 3
ампулы);
мочевина.

40. Основные преимущества парового метода стерилизации:

надежность;
доступность;
высокая эффективность;
хорошая способность проникать в ткани;
отсутствие токсичности;
низкая стоимость;
возможность использования для
стерилизации жидкостей;

41. Основные недостатки парового метода стерилизации:

влажность- чрезмерное увлажнение
материала; пар не может глубоко проникнуть
при плотно уложенном материале;
ряд инструментов не выдерживают
обработки водяным паром при высоких
температурах;
не применим для стерилизации порошков и
масел.

42. Воздушный метод стерилизации

Воздушный метод проводится в сухожаровом
шкафу с соблюдением следующих режимов:
180 градусов - 1 час;
160 градусов - 150 минут (2,5 часа).
Воздушным методом стерилизуют
хирургические, гинекологические,
стоматологические инструменты, изделия из
силиконовой резины

43. Преимущества метода воздушной стерилизации:

Проникновение во все части инструментов,
которые не могут быть механически
разобраны;
Отсутствие коррозийного эффекта;
Низкая стоимость;
Возможность использования для
стерилизации порошков, безводных масел,
стекла.

44. Отрицательные стороны метода воздушной стерилизации

Плохая теплопроводность воздуха, вследствие чего
передача тепла осуществляется преимущественно
путем конвекции (перемещения) воздуха. Более
нагретый воздух поднимается вверх и, соприкасаясь с
холодными предметами, отдает им тепло.
Охлажденный воздух перемещается вниз, где вновь
нагревается поднимается вверх. Такой механизм
действует до тех пор, пока будет существовать разница
температуры.
Длительность одного рабочего цикла (прогревание
время стерилизации, охлаждение).Весь рабочий цикл
продолжается 2-4 часа в зависимости от объема
стерилизационной камеры.

45. Химический метод стерилизации

растворы химических препаратов
(растворы перикиси водорода,
надуксусные кислоты, глутаровый
альдегид, растворы фармальдегида)
Рекомендуется для изделий из
полимерных материалов, резины, стекла,
коррозийно-стойких металлов.

46. Химический метод стерилизации

Режимы:
6 % раствор перекиси водорода при температуре +18° в
течение 6 часов;
6 % раствор перекиси водорода при температуре +50° в
течение 3 часов.
Химический метод применяют для стерилизации изделий
из термолабильных материалов, изделия должны быть
сухими (во избежание разбавления рабочих растворов).
Используются стерильные емкости, стерилизацию
проводят, строго соблюдая правила асептики

47. Другие методы стерилизации

Радиационный метод
применяется в промышленном производстве.
Плазменный метод - используются стерилизующие средства на
основе перекиси водорода в плазменных стерилизаторах.
Стерилизуют хирургические, эндоскопические, оптические
устройства и другие изделия из металлов, латекса, пластмасс,
стекла и кремния.
Гласперленовые стерилизаторы допускается применять в
стоматологических медицинских организациях и
косметологических кабинетах. Стерилизуют боры и другие
мелкие инструменты при полном погружении их в среду
нагретых стеклянных шариков (температура 240 градусов).
Инфракрасным методом стерилизуют стоматологические и
некоторые инструменты из металла.

48. Показатели качественной работы стерилизаторов:

Проверка работоспособности оборудования;
Отсутствие роста микроорганизмов при посеве
бак.тестов;
Изменение исходного состояния (цвет, агрегатное
состояние) химических индикаторов;
Отсутствие высева микрофлоры со стерильных
изделий;
Контроль за упаковкой (химические индикаторы
находятся глубоко внутри упаковки);
Отказ от использования инструментария при
некачественной стерилизации.

49. Упаковка, используемая при стерилизации

Упаковки медицинских изделий
предназначены для сохранения стерилизации
этих изделий во время хранения до их
использования. Изделия медицинского
назначения В МО чаще упаковываются в
стерилизационные коробки (биксы),
бумажные мешки, бязевую ткань- при
стерилизации паровым методом.
При использовании воздушного метода
инструменты стерилизуются чаще всего в
открытом виде, на лотках.

50. Хранение стерильного мединструментария

Накрытие стерильного столика в
операционных, перевязочных
Использование медицинских изделий
сразу по назначению
Хранение в бактерицидных шкафах ( чаще
применяется в частных медицинских
центрах и стоматологических кабинетах)

51. Контроль качества дезрастворов

Контроль качества приготовляемых
растворов проводится специалистами
дезинфекционных станции или СЭС при
планом обследовании и по
эпидпоказаниям. В основном
осуществляется контроль качества
приготовления хлорсодержащих
препаратов (на активность хлора).

52. Проблемы при организации дезинфекционно-стерилизационного режима

Проблемы при организации дезинфекционностерилизационного режима
Высокая изношенность стерилизационной
аппаратуры
Низкая обеспеченность МО стерилизующей
аппаратурой на автоматизированной системе
управления
Дезинфекция и предстерилизационная обработка
медицинских изделий проводится в основном в
ручную
Низкая обеспеченность МО бактерицидными
шкафами для хранения стерильного инструментария
Нарушение технологии приготовления
дезинфицирующих средств

53. Предложения

Автоматизация всех этапов обработки медицинских изделий
от процесса дезинфекции до стерилизации
Обеспечение современной стерилизующей аппаратурой на
автоматическом режиме
Обеспечение современным оборудованием для проведения
механической и предстерилизационной очистки медицинских
изделий
Обеспечение бактерицидными шкафами для хранения
стерильных мед инструментов
Широкое внедрение современного упаковочного материала
для индивидуальных упаковок, которые гарантируют
длительную стерильность
Использование современных дезинфекционных средств с
учетом регулярной их замены на более эффективные

54.

Изделия медицинского назначения
многократного применения, которые в
процессе эксплуатации могут вызвать
повреждение кожи, слизистой оболочки,
соприкасаться с раневой поверхностью,
контактировать с кровью или
инъекционными препаратами, подлежат
после дезинфекции предстерилизационной
очистке и стерилизации в соответствии
действующими нормативными документами.

55.

Дезинфекцию и стерилизацию проводит специально
обученный персонал учреждения.
Приготовление дезрастворов, их хранение, проводят в
специально выделенном и оборудованном помещении.
Емкости с дезинфицирующими, моющими, и
стерилизующими средствами должны иметь четкие
надписи с указанием препарата, его концентрации,
назначения, даты приготовления, предельного срока
годности.
После дезинфекции стоматологические инструменты
подвергают предстерилизационной очистке, кроме тех
случаев, когда для обеззараживания используют
средства, обладающие одновременно моющими и
дезинфекционными свойствами. По окончании
дезинфекции каждое изделие при помощи щетки моют в
растворе в течение 0,5 мин и ополаскивают проточной, а
затем дистиллированной водой.

56.

Контроль качества предстерилизационной
обработки проводят путем постановки
азопирамовой пробы.
Контролю подлежит 1 % каждого вида изделий,
обработанных за сутки, но не менее 3—5 единиц,
кратность проведения проб – ежедневно.
Результаты контроля учитываются в
специальном журнале.
После предстерилизационной очистки проводят
стерилизацию.

57.

Изделия из стекла и металла стерилизуют
воздушным или паровым методом.
Изделия из текстильных материалов (вата,
марлевые салфетки, другой мягкий материал
для манипуляций) стерилизуют паровым
методом.

58.

В кабинетах строго следят за сроками реализации
стерильного материала и инструментов.
В тех случаях, когда стоматологические инструменты
стерилизуют в воздушных стерилизаторах без упаковки,
стерилизацию необходимо проводить непосредственно
перед накрытием стерильного стола.
Все манипуляции, связанные с подготовкой стерильного
стола, проводят в стерильных перчатках, маске, халате.
Предметы со стерильного стола должны браться
корнцангом , который хранится в стерильной емкости.
Не использованные в течение смены материалы и
инструменты со стерильного стола направляют на
повторную стерилизацию

59.

Для стерилизации изделий медицинского назначения
рекомендовано два режима стерилизации водяным
насыщенным паром под избыточным давлением:
температура стерилизации 132±2ºС, 0,2±0,02МПа в
течение 20 минут;
Стерилизацию сухим горячим воздухом проводят при
температуре 180ºС (время стерилизационной выдержки
– 60 мин.) При температуре 160ºС (время
стерилизационной выдержки – 150 мин).
Для ряда воздушных стерилизаторов нового поколения с
предельными отклонениями температуры в
стерилизационной камере ±3ºС от номинального
значения температуры стерилизации 180ºС время
стерилизационной выдержки может быть сокращено с 60
до 45 минут, что указано в паспорте на конкретную
модель стерилизатора.

60.

Для продолжительного хранения стерильных
медицинских инструментов (в течение 7 сут.),
используют:
- столы “Панмед-1”;
- камеры УФ-бактерицидные КБ-02-«Я»
Их эксплуатация должна осуществляться в
строгом соответствии с рекомендованным
режимом применения.

61.

62.

Подготовка камеры к загрузке стерильными
инструментами:
- перед подключением камеры проводят дезинфекцию
наружных поверхностей камеры в соответствии с НД.
- внутренние поверхности камеры, за исключением
поверхности и разъемов бактерицидной лампы,
промывают с помощью средств, разрешенных для
проведения предстерилизационной очистки. Остатки
моющих средств смывают прокипяченной питьевой
водой, после чего, внутренние поверхности камеры
двукратно (с выдержкой в течение 1 часа после каждой
обработки) протирают ветошью, смоченной 6%
раствором перекиси водорода. Решетка камеры должна
быть простерилизована. После установки решетки
крышку камеры закрывают и включают бактерицидную
лампу на 30 мин.

63.

Загрузка камеры:
загрузку камеры проводят в асептических условиях.
Персонал, проводящий загрузку, должен использовать
стерильную спецодежду и перчатки;
- стерильные инструменты раскладывают стерильным
корнцангом в один слой, продвигаясь от задней стенки
камеры к передней. Время загрузки камеры не должно
превышать 10 минут. Если крышка была открыта более 10
минут, все инструменты вновь подлежат стерилизации, а
камера – повторной обработке;
- после загрузки камеры крышку закрывают и не
открывают в течение 2,5 минут. Через 2,5 минуты
инструменты готовы к использованию;
- инструменты допускается хранить в камере с
включенной бактерицидной лампой не более 7 суток. По
истечении 7 суток эксплуатации, камера должна быть
подвергнута обработке, не использованные инструменты
подлежат повторной стерилизации.

64.

Все помещения, оборудование, медицинский и
другой инвентарь должны содержаться в
чистоте. Влажная уборка (текущая уборка)
помещений должна осуществляться не менее 2-х
раз в сутки с использованием моющих и
дезинфицирующих средств, разрешенных к
использованию в установленном порядке. Во
время уборки обеззараживают мебель,
оборудование, краны и раковины, дверные
ручки, пол. Обеззараживание проводят
двукратным протиранием или орошением
дезинфицирующим раствором.

65.

После влажной уборки и
просушивания включают бактерицидные лампы
согласно НД.
После кварцевания проветривание обязательно.
Генеральная уборка с обработкой стен, окон,
подоконников, полов, мебели, оборудования,
инвентаря и светильников должна проводиться:
- в терапевтических кабинетах по графику не
реже 1 раза в месяц;
- в операционном блоке, перевязочных,
процедурных, хирургических и ортопедических
кабинетах, стерилизационных не реже 1 раза в
неделю.

66.

Во время работы после каждого пациента обрабатывают
дезраствором подголовники и сиденье кресла,
светильник и ручку светильника при универсальной
стоматологической установке, рабочий столик методом
орошения или двукратного протирания. При попадании
биологических жидкостей пациента на различные
поверхности необходимо провести их срочное
обеззараживание двукратным протиранием ветошью,
смоченной дезинфицирующими растворами.
Наконечники к бормашинам дезинфицируют путем
двукратного протирания (до и после лечения пациента)
наружных поверхностей и канала для бора стерильным
марлевым тампоном, смоченным 70% этиловым спиртом.

67.

Два раза в день после первой смены и в конце
рабочего дня дезинфицируют отсасывающие
установки. Рабочий раствор объемом 1л
пропускают через отсасывающую систему
зубоврачебной установки в течение 2 мин и
затем оставляют в ней на 30 мин.
Емкости для дезинфекции мебели,
оборудования, пола, стен должны быть
раздельными для терапевтических,
хирургических, ортопедических кабинетов.
Уборочный инвентарь (ведра, тазы, ветошь,
швабры и др.) должен иметь четкую маркировку
с указанием помещений и видов уборочных
работ, использоваться строго по назначению,
обрабатываться и храниться в выделенном
помещении.

68.

После использования уборочный инвентарь, ветошь
обеззараживают в растворе дезинфектанта, после чего
ветошь прополаскивают и сушат.
Уборку коридоров и санузлов проводят 2 раза в день с
использованием дезинфицирующих средств.
Служебные помещения для медперсонала убирают 1 раз
в день растворами моющих средств.
Мытье оконных стекол должно проводиться не реже 1
раза в 3 месяца снаружи (весной, летом, осенью).
Урны, установленные для сбора мусора у входа в здания
и на территории должны очищаться от мусора
ежедневно и содержаться в чистоте.